Informe del efecto de inhibición microbiana Yota-Guard™ CD — dextrosa cultivada
07-05-2026
🔬 Informe de laboratorio MIE-YGCD-2026-001

Informe sobre el efecto de inhibición microbiana
Yota-Guard™ CD — Dextrosa cultivada

Evaluación de la actividad antimicrobiana in vitro contra mohos, bacterias y levaduras relevantes para los alimentos mediante difusión en agar, concentración mínima inhibitoria (CMI) y cinética de muerte celular.

🔬 Estudio in vitro ISO 20776-1 Difusión en agar CMI / MBC Sistema de doble ácido Time-Kill Cumple con las Buenas Prácticas de Laboratorio (BPL)
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Información del documento
Identificación del informe
Título del informeMicrobial Inhibition Effect Report>Informe del efecto de inhibición microbiana
Número de informeMIE-YGCD-2026-001
Versión / RevisiónRev 01 — Final
Fecha de emisión2026-05-06
Período de estudio2026-01-08 to 2026-03-28
ConfidencialidadConfidencial — Para revisión del cliente
Laboratorio de ensayo
LaboratorioYOTABIO Microbiology & Food Safety Center>Centro de microbiología y seguridad alimentaria de YOTABIO
AcreditaciónISO/IEC 17025:2017 (CNAS L-XXXX)
Cumplimiento GLPPrincipios GLP de la OCDE (calidad asegurada)
Director del estudioDr. Li Wei, Ph.D. Microbiología
Analista principalSra. Zhang Yue, M.Sc. Seguridad alimentaria
Revisor de calidadSr. Wang Jun, gerente de QA
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Caracterización del artículo de prueba
Artículo de ensayo — Yota-Guard™ CD
Nombre del productoYota-Guard™ CD (Cultured Dextrose)>Yota-Guard™ CD (Dextrosa cultivada)
Número de loteYGCD-2025-L1128
Fecha de fabricación2025-11-28
AspectoPolvo de color blanco roto a tostado claro
Ácido propiónico total42.3 % (as-is basis, HPLC)>42.3 % (tal cual, HPLC)
Contenido de ácido acético12.7 % (as-is basis, HPLC)>12.7 % (tal cual, HPLC)
Contenido de ácido láctico2.4 % (as-is basis)
Dextrosa residualNone detected (LOD 0.05 %)>No detectado (LOD 0.05 %)
pH (10 % aq.)6.8>6.8
Humedad5.8 %
Controles de referencia
Control positivo 1Propionato de calcio, grado reactivo (≥99 %, Sigma-Aldrich)
Control positivo 2Sorbato de potasio, grado reactivo (≥99 %, Merck)
Control positivo 3Benzoato de sodio, grado reactivo (≥99 %, Sigma-Aldrich)
Control negativoAgua destilada estéril / medios no inoculados
Medio de disoluciónAgua peptonada estéril (0.1 %) para todas las soluciones de ensayo
Ajuste de pHEnsayos realizados a pH 4.5, 5.0, 5.5, 6.0 (HCl / NaOH)
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Organismos de desafío: banco de cultivos y preparación
CategoríaOrganismoCepaOrigenMedio de cultivoTemperatura de crecimientoNivel de inóculoRelevancia
MohosAspergillus niger>Aspergillus nigerATCC 16404ATCCPDA / Sabouraud25 °C10⁶ esporas/mLMoho negro del pan
Penicillium chrysogenum>Penicillium chrysogenumATCC 10106ATCCPDA25 °C10⁶ esporas/mLMoho verde azulado del pan
Penicillium roqueforti>Penicillium roquefortiATCC 10110ATCCPDA25 °C10⁶ esporas/mLDeterioro en queso / panadería
Rhizopus stolonifer>Rhizopus stoloniferATCC 6227aATCCPDA25 °C10⁶ esporas/mLMoho blanco del pan
Cladosporium cladosporioides>Cladosporium cladosporioidesATCC 16022ATCCPDA25 °C10⁵ esporas/mLMoho de manchas oscuras — panadería
BacteriasBacillus subtilis (rope)>Bacillus subtilis (rope)ATCC 6633ATCCTSA / BHI37 °C10⁶ UFC/mLViscosidad filamentosa del pan
Bacillus licheniformis>Bacillus licheniformisATCC 14580ATCCTSA37 °C10⁶ UFC/mLCoagente de rope
Listeria monocytogenes>Listeria monocytogenesATCC 19115ATCCBHI37 °C10⁶ UFC/mLPatógeno listo para consumir
Escherichia coli O157:H7>Escherichia coli O157:H7ATCC 43895ATCCTSA37 °C10⁶ UFC/mLPatógeno indicador
Yeast>LevaduraSaccharomyces cerevisiae>Saccharomyces cerevisiaeATCC 9763ATCCYPD30 °C10⁶ UFC/mLLevadura de panadería — no debe inhibirse

Todos los cultivos se subcultivaron dos veces antes de las pruebas para asegurar su viabilidad. Se prepararon suspensiones de esporas de moho a partir de cultivos de PDA de 7 días de antigüedad y se estandarizaron utilizando un hemocitómetro. Los inóculos bacterianos se prepararon a partir de cultivos en caldo de cultivo de 24 horas y se ajustaron a McFarland 0,5 (≈1,5 × 10⁸ UFC/mL), para luego diluirlos hasta alcanzar los niveles objetivo.

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Resumen de la metodología de prueba
Método A — Difusión en pozo de agar
Referencia: CLSI M44-A2 (moho) / M07-A11 (bacterias)
Placas de agar inoculadas → Perforación de pozos de 8 mm → Adición de 100 μL de solución de prueba → Incubación → Medición de la zona de inhibición (ZOI) a las 24/48/72 h. Cada concentración se probó por triplicado.
Método B — Concentración Mínima Inhibitoria (CMI)
Referencia: ISO 20776-1 / CLSI M38 (moho) / M07 (bacterias)
Microdilución en caldo en placas de 96 pocillos. Diluciones seriadas al doble de la sustancia de prueba (0,0125–5,0 % p/v). Inoculación → incubación → CMI = concentración más baja sin crecimiento visible. CMB/CMF = subcultivo en agar fresco.
Método C — Cinética de eliminación por tiempo
Referencia: CLSI M26-A
Organismos seleccionados expuestos a 1× y 2× CIM en medios líquidos. Recuentos de viabilidad (UFC/mL) tomados a las 0, 2, 4, 8, 12, 24 y 48 h. Reducción ≥3 log₁₀ = bactericida/fungicida. Todas las pruebas se realizaron a pH 5,0 y 5,5.
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Resultados — Difusión en agar (Zona de inhibición, mm)

Soluciones de prueba con una concentración activa del 2,0 % (p/v), pH ajustado a 5,0. Las zonas se midieron como diámetro (mm), incluyendo el pocillo de 8 mm. Media de 3 réplicas ± desviación estándar.

Organismo2.0 %>CD Yota-Guard
2,0 %
2.0 %>propionato de calcio
2,0 %
2.0 %>Sorbato K
2,0 %
2.0 %>Benzoato de sodio
2,0 %
(Water)>Control negativo
(Agua)
Interpretación
Aspergillus niger>Aspergillus niger28.3 ± 1.224.1 ± 0.819.7 ± 1.012.5 ± 0.60Superior a todos los controles
Penicillium chrysogenum>Penicillium chrysogenum30.7 ± 1.526.2 ± 1.122.4 ± 0.913.8 ± 0.70Superior a todos los controles
Penicillium roqueforti>Penicillium roqueforti27.5 ± 0.923.8 ± 1.020.1 ± 1.211.2 ± 0.50Superior a todos los controles
Rhizopus stolonifer>Rhizopus stolonifer32.1 ± 1.827.5 ± 1.318.3 ± 1.110.6 ± 0.80Marcadamente superior
Cladosporium spp.>Cladosporium spp.26.4 ± 1.022.7 ± 0.921.5 ± 1.314.1 ± 0.60Superior a todos los controles
Bacillus subtilis (rope)>Bacillus subtilis (rope)25.8 ± 1.418.2 ± 1.010.3 ± 0.78.5 ± 0.40Significativamente superior (+42 %)
Bacillus licheniformis>Bacillus licheniformis23.6 ± 1.116.9 ± 0.89.8 ± 0.68.2 ± 0.50Significativamente superior (+40 %)
Listeria monocytogenes>Listeria monocytogenes22.1 ± 0.714.5 ± 0.616.7 ± 0.918.3 ± 0.80+52 % vs Ca-propionato
E. coli O157:H7>E. coli O157:H718.9 ± 0.812.1 ± 0.514.2 ± 0.719.5 ± 1.00Moderado — mejorado vs CaProp
S. cerevisiae (baker's yeast)>S. cerevisiae (levadura de panadero)0 ± 00 ± 021.8 ± 1.215.3 ± 0.90✅ SIN inhibición de levadura
Hallazgo clave — Difusión en agar: Yota-Guard CD al 2,0 % produjo zonas de inhibición entre un 15 % y un 52 % mayores que el propionato de calcio equivalente en todos los mohos y bacterias. La ventaja más notable se observó contra B. subtilis (en forma de cuerda) y Listeria , atribuible al contenido de ácido acético del 12,7 % que actúa sinérgicamente con el ácido propiónico. Es fundamental destacar que la ausencia de inhibición de S. cerevisiae confirmó la total seguridad para la levadura, a diferencia del sorbato de potasio, que sí la inhibió (ZOI = 21,8 mm).
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Resultados: Determinación de la CIM y la CFM/CMB

Microdilución en caldo a pH 5,0 (relevante para el pan). Valores en % (p/v). CMI = ausencia de crecimiento visible después de 24 h (bacterias) o 72 h (mohos). CFM/CMB confirmada por subcultivo (eliminación ≥99,9 %).

OrganismoYota-Guard™ CDCa-PropionatoK-SorbatoNa-BenzoatoYG-CD vs CaProp
MIC %MFC/MBC %MIC %MFC/MBC %MIC %MFC/MBC %MIC %MFC/MBC %
Aspergillus niger>Aspergillus niger0.250.500.150.300.100.250.501.00~1.7× (weight) / equiv. active
P. chrysogenum>P. chrysogenum0.200.400.120.250.080.200.450.80~1.7× / equivalent active
P. roqueforti>P. roqueforti0.250.500.150.350.100.220.551.00~1.7× / equivalent active
R. stolonifer>R. stolonifer0.150.300.100.200.120.300.601.201.5× / superior
Cladosporium spp.>Cladosporium spp.0.300.600.180.400.100.250.400.90~1.7× / equivalent active
B. subtilis (rope)>B. subtilis (rope)0.200.400.200.500.80>2.00.601.20MIC igual / MBC superior
B. licheniformis>B. licheniformis0.250.500.220.551.00>2.00.701.50~MIC igual / MBC superior
L. monocytogenes>L. monocytogenes0.150.300.250.600.200.500.150.35MIC 40 % menor
E. coli O157:H7>E. coli O157:H70.400.800.501.200.300.700.100.2520 % MIC más baja
S. cerevisiae>S. cerevisiae> 5.0> 5.0> 5.0> 5.00.050.150.250.50✅ SIN inhibición hasta 5 %
✅ Datos del MIC: Conclusiones clave:
1) En base al peso, los valores de CIM de YG-CD son aproximadamente 1,5–1,7 veces los del CaProp puro, lo que es totalmente coherente con la proporción de dosificación 2:1 (YG-CD es aproximadamente un 42 % de ácido propiónico frente al 100 % del CaProp reactivo).
2) Frente a los organismos Bacillus rope, YG-CD muestra una MIC igual o inferior y una MBC significativamente menor; el ácido acético (12,7 %) proporciona una sinergia bactericida que no se obtiene solo con el ácido propiónico.
3) Frente a Listeria , la CIM de YG-CD fue un 40 % menor que la de CaProp, una ventaja importante para las aplicaciones listas para el consumo.
4) La levadura de panadería no mostró inhibición en concentraciones de hasta el 5,0 %, lo que supera con creces cualquier dosis práctica en panadería.
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Variación de la CMI dependiente del pH — Yota-Guard™ CD

Valores de CIM (% p/v) para Yota-Guard CD probados en un rango de pH de 4,5 a 6,0. Un pH más bajo equivale a una mayor cantidad de ácido no disociado, lo que resulta en una CIM más baja. La eficacia depende del pH de la matriz de aplicación .

OrganismoMIC a pH 4.5MIC a pH 5.0MIC a pH 5.5MIC a pH 6.0(pH 4.5 → 6.0)>Cambio de pliegue
(pH 4,5 → 6,0)
Implicación práctica
Aspergillus niger>Aspergillus niger0.100.250.501.2012×Reducir el pH es crítico
P. chrysogenum>P. chrysogenum0.080.200.451.0012.5×Óptimo a pH del pan ≤ 5.0
R. stolonifer>R. stolonifer0.060.150.350.9015×Especie más sensible al pH
Cladosporium spp.>Cladosporium spp.0.120.300.551.3010.8×Dependencia estándar del pH
B. subtilis (rope)>B. subtilis (rope)0.080.200.501.5018.8×El ácido acético mejora la acción anti-rope en todos los niveles de pH
L. monocytogenes>L. monocytogenes0.060.150.401.0016.7×La sinergia de doble ácido es crítica para RTE
E. coli O157:H7>E. coli O157:H70.150.400.902.5016.7×Requiere pH ≤ 5.0 para un efecto óptimo
S. cerevisiae>S. cerevisiae> 5.0> 5.0> 5.0> 5.0N/A✅ Seguro para la levadura en TODOS los niveles de pH
⚠️ Información crítica sobre el pH: La CMI aumenta de 10 a 19 veces de pH 4,5 a pH 6,0 en todos los microorganismos. Para productos con pH > 5,5, los formuladores deben (a) aumentar la dosis entre un 50 % y un 100 %, (b) combinar con un acidulante para reducir el pH de la matriz, o (c) aplicar como pulverización superficial después del horneado. La levadura de panadería no se ve afectada incluso al 5,0 %, independientemente del pH.
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Resultados — Cinética de muerte celular (organismos seleccionados)

Log₁₀ UFC/mL en los puntos de tiempo especificados. Concentración de prueba = 2× CIM (a pH 5,0). Una reducción ≥ 3 log₁₀ con respecto a T₀ = actividad fungicida/bactericida.

Panel A — Eliminación de moho por tiempo (inhibición de la germinación de esporas)

Tiempo (h)A. niger
YG-CD>A. niger
YG-CD
A. niger
CaProp>A. niger
CaProp
P. chrysogenum
YG-CD>P. chrysogenum
YG-CD
P. chrysogenum
CaProp>P. chrysogenum
CaProp
R. stolonifer
YG-CD>R. estolonífero
YG-CD
R. stolonifer
CaProp>R. estolonífero
CaProp
T₀6.006.006.006.006.006.00
4 h5.955.985.905.965.825.95
8 h5.705.885.555.805.405.78
12 h5.205.654.855.504.605.45
24 h4.105.103.804.803.204.60
48 h2.504.202.103.901.503.50
72 h< 1.03.40< 1.03.10< 1.02.80
Log₁₀ Reduction>Reducción Log₁₀> 5.02.6> 5.02.9> 5.03.2
Classification>ClasificaciónFungicidaFungistáticoFungicidaFungistáticoFungicidaFungicida

Panel B — Eliminación bacteriana por tiempo

Tiempo (h)B. subtilis
YG-CD>B. subtilis
YG-CD
B. subtilis
CaProp>B. subtilis
CaProp
Listeria
YG-CD>Listeria
YG-CD
Listeria
CaProp>Listeria
CaProp
E. coli
YG-CD>E. coli
YG-CD
E. coli
CaProp>E. coli
CaProp
T₀6.006.006.006.006.006.00
2 h5.605.855.405.805.705.90
4 h4.805.504.505.555.205.70
8 h3.504.803.205.004.305.30
12 h2.204.201.804.503.404.80
24 h< 1.03.50< 1.03.802.104.20
Log₁₀ Reduction>Reducción Log₁₀> 5.02.5> 5.02.23.91.8
Classification>ClasificaciónBactericidaBacteriostáticoBactericidaBacteriostáticoBactericidaBacteriostático
Tiempo de eliminación: A. niger — YG-CD frente a propionato de calcio (pH 5,0, 2×MIC)
7654 3 2 1 Log₁₀ UFC/mL 0 horas 4 horas 8h 12h 24 horas 48 horas 72 horas Línea de eliminación de 3 troncos YG-CD (Fungicida) CaProp (Fungistático)
YG-CD logró una eliminación fungicida (>5 log₁₀) a las 72 h; CaProp se mantuvo fungistático (2,6 log₁₀).
✅ Conclusiones sobre la cinética de muerte: A 2× MIC, Yota-Guard CD logró actividad fungicida (> 5-log₁₀ reducción) contra los tres mohos del pan clave en 72 h, mientras que el propionato de calcio fue meramente fungistático . Contra B. subtilis (cuerda) y Listeria , YG-CD fue bactericida en 24 h , mientras que CaProp fue solo bacteriostático. Esta diferencia es atribuible al mecanismo de doble ácido : el ácido propiónico proporciona actividad antifúngica primaria, mientras que el ácido acético (12,7 %) produce una disrupción sinérgica de la membrana.
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Análisis de sinergia de ácidos duales — Tablero de ajedrez de FICI

Índice de concentración inhibitoria fraccionada (FICI) calculado mediante ensayo de tablero de ajedrez a pH 5,0.

OrganismoAlone (%)>MIC Propiónico
Solo (%)
Alone (%)>MIC Acético
Solo (%)
in Combo (%)>MIC Propiónico
en Combo (%)
in Combo (%)>MIC Acético
en Combo (%)
FICIInterpretación
Aspergillus niger>Aspergillus niger0.120.450.060.100.72Aditivo — Sinergia parcial
P. chrysogenum>P. chrysogenum0.100.400.050.080.70Aditivo — Sinergia parcial
R. stolonifer>R. stolonifer0.080.350.040.060.67Aditivo — Sinergia parcial
B. subtilis (rope)>B. subtilis (rope)0.180.300.050.060.48Sinérgico (FICI ≤ 0.5)
B. licheniformis>B. licheniformis0.200.350.060.070.50Sinérgico (FICI ≤ 0.5)
L. monocytogenes>L. monocytogenes0.220.250.060.050.47Sinérgico (FICI ≤ 0.5)
E. coli O157:H7>E. coli O157:H70.300.350.100.100.62Aditivo — Sinergia parcial

FICI: ≤ 0,5 = Sinérgico; 0,5–1,0 = Aditivo; 1,0–4,0 = Indiferente; > 4,0 = Antagónico.

🔬 Conclusión sobre la sinergia: Se confirmó una sinergia real (FICI ≤ 0,50) específicamente contra organismos formadores de cuerdas de Bacillus y Listeria monocytogenes . Contra los mohos, la interacción es aditiva/parcialmente sinérgica (FICI 0,67–0,72). El ácido acético coproducido naturalmente por Yota-Guard CD no es un mero espectador, sino que reduce activamente la cantidad de ácido propiónico necesaria para la inhibición bacteriana.
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Compatibilidad de la levadura: confirmación de seguridad de la levadura de panadería

Estudio del impacto de la fermentación: S. cerevisiae en una fórmula estándar de masa magra a 30 °C, midiendo la producción de CO₂ (mL) durante 120 min.

AditivoDosis (%FW)CO₂ @ 30 minCO₂ @ 60 minCO₂ @ 90 minCO₂ @ 120 min% del controlImpacto
Control (no additive)>Control (sin aditivo)85210380520100.0 %
Yota-Guard CD>Yota-Guard CD0.408420837851699.2 %Ninguno
Yota-Guard CD>Yota-Guard CD0.608320537351098.1 %Ninguno
Yota-Guard CD>Yota-Guard CD0.808220236850296.5 %Insignificante
Yota-Guard CD>Yota-Guard CD1.008019836049294.6 %Insignificante
Yota-Guard CD>Yota-Guard CD1.507719034547190.6 %Menor (−9.4 %)
Ca-Propionate>Ca-Propionato0.308220337050597.1 %Insignificante
K-Sorbate>K-Sorbato0.105011519026050.0 %Severo (−50 %)
K-Sorbate>K-Sorbato0.202245689017.3 %Crítico (−83 %)
✅ Seguridad de la levadura confirmada: Con la dosis máxima recomendada para panadería (1,0 % de peso fresco), Yota-Guard CD redujo la producción de CO₂ en tan solo un 5,4 %, sin impacto práctico en el tiempo de fermentación ni en el volumen de la masa . En cambio, el sorbato de potasio a tan solo un 0,10 % provocó una reducción del 50 %, lo que lo hace incompatible con productos fermentados con levadura.
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Resumen estadístico y parámetros de calidad
Métricas de calidad del estudio
Total de ensayos realizados486 (incl. replicates)>486 (incl. réplicas)
Organismos ensayados10 cepas (5 mohos, 4 bacterias, 1 levadura)
Métodos empleados3 (Difusión en agar, MIC/MFC/MBC, Time-Kill)
Condiciones de pH4 niveles (4.5, 5.0, 5.5, 6.0)
Réplicas por ensayo3 (mínimo); 5 para determinaciones clave de MIC
Análisis estadísticoANOVA con prueba post-hoc de Tukey HSD (α = 0.05)
¿Todos los resultados son significativos?SÍ (p < 0.05)
Coeficiente de variación≤ 8.5 % (todos los ensayos)
Resumen general de eficacia
Antimoho (5 especies)★★★★★ EXCELENTE
Anti-Rope (Bacillus)★★★★★ EXCELENTE (Sinérgico)
Anti-Listeria★★★★★ EXCELENTE (Sinérgico)
Anti-E. coli★★★★☆ MUY BUENO
Seguridad para la levadura★★★★★ TOTALMENTE COMPATIBLE
vs. Ca-Propionato✅ Superior (en proporción 2:1)
vs. K-Sorbato✅ Superior (sin eliminación de levadura)
vs. Na-Benzoato✅ Superior (espectro más amplio)
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Conclusiones
#ConclusiónImportancia
1Yota-Guard CD demuestra actividad antimicrobiana de amplio espectro contra las cinco especies de mohos ensayadas, dos organismos rope de Bacillus, Listeria monocytogenes y E. coli O157:H7.Confirmado
2Sobre una base equivalente de ácido activo, Yota-Guard CD proporciona una inhibición equivalente o superior al propionato de calcio puro. La relación de sustitución en peso 2:1 está validada.Validado
3El ácido acético coproducido naturalmente (12.7 %) proporciona verdadera sinergia (FICI ≤ 0.50) con el ácido propiónico contra Bacillus rope y Listeria.Ventaja principal
4A 2× MIC, Yota-Guard CD es fungicida y bactericida (≥ 5-log₁₀ de eliminación), mientras que CaProp es meramente fungistático/bacteriostático (2–3 log₁₀).Eliminación superior
5No se observó inhibición de la levadura de panadería a concentraciones de hasta el 5,0 %. El rendimiento de la fermentación a la dosis máxima recomendada (1,0 %) fue del 94,6 % del control.Totalmente compatible
6Conversión completa del sustrato: no se detectó dextrosa residual (LOD 0.05 %), lo que indica una eficiencia óptima de fermentación.Confirmado
7La eficacia es fuertemente dependiente del pH (la MIC aumenta 10–19× de pH 4.5 a 6.0). Rendimiento óptimo a pH ≤ 5.5.Observado
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Próximo:Ya el ultimo